DOI: https://doi.org/10.18524/2307-4663.2020.1(48).200905

АНТИМІКРОБНА АКТИВНІСТЬ ЛАКТОБАЦИЛ ВІДНОСНО СТАФІЛОКОКІВ, ВИДІЛЕНИХ З БІОПЛІВОК ХВОРИХ ACNE VULGARIS

Г. С. Лаврик, О. П. Корнійчук

Анотація


Мета. Визначити ефективність антимікробної активності ізолятів лактобацил відносно біоплівкоутворювальних стафілококів in vitro. Методи. У дослідженні використано 15 штамів біоплівкоутворювальних стафілококів, які виділено з гнійних пустул хворих acne vulgaris та 7 штамів лактобацил. L. fermentum одержано з ротоглоткового слизу; L. рlantаrum – з випорожнень практично здорових осіб; пробіотичний штам L. рlantarum 8P-A3 – з препарату «Лактобактерин» (Біофарма, Київ). Антимікробну активність бактеріальних культур лактобацил та відфільтрованих надосадових рідин лактобацил вивчали щодо біоплівкоутворювальних штамів S. aureus за допомогою методу дифузії в агар через 12, 24, 48 год. Результати. Антагоністичну активність лактобацил визначали щодо 15 штамів S. aureus, у яких виявлено гени icaA та icaD. Для усіх штамів виду L. рlantаrum (12 год) встановлено високу антагоністичну активність та середню для L. fermentum. У 24-годинних досліджуваних культур лактобацил виявлена тенденція до зниження активності. Через 48 год спостерігається значне зменшення зон затримки росту стафілококів у порівнянні з результатами 12-ти годинних культур в середньому 7,9±0,2 мм проти 12,5±0,7 мм, відповідно. Фільтрування надосадової рідини лактобацил (12 год) призвело до різкого зменшення їхньої активності у 2,8 рази у порівнянні з показниками нативних культур лактобацил. Висновки. Антибактеріальна активність нативних бактеріальних культур лактобацил щодо біоплівкоутворювальних штамів S. aureus через 12 год досягає максимуму. Встановлено мінімальні показники пригнічувальної дії відфільтрованої надосадової рідини лактобацил щодо біоплівкоутворювальних штамів S. aureus. Ізоляти L. plantarum виявляють вищу антагоністичну активність відносно стафілококів, ніж L. fermentum, і можуть бути запропоновані для розробки комбінованої терапії акне.

Ключові слова


антагонізм; L. plantarum; L. fermentum; біоплівка; S. aureus

Повний текст:

PDF

Посилання


Bakteriolohiia i virusolohiia: Normatyvne vyrobnycho-praktychne vydannia. Chastyna 2. – K.: MNIATs med. statystyky, MVTs «Medinform», 2014.472 p. (In Ukrainian).

Burceva GN, Sergeev AY, Arzumanyan VG. et al. Perifollicular cutaneous microbiota in acne patients. Part I. Common patterns of colonization and resistance to systemic antimicrobials. Immunopathology, Allergology, Infectology. 2013; 2: 84–87 (In Russian).

Lavryk GS, Korniychuk OP, Besedina AS, Vorobets ZD. The arginase pathway of L-arginine metabolism of peripheral blood lymphocytes in patients with acne vulgaris. Regulatory Mechanisms in Biosystems. 2017;8 (4): 596–601 (In Ukrainian).

Arciola CR, Campoccia D, Ravaioli S, Montanaro L. Polysaccharide intercellular adhesin in biofilm: structural and regulatory aspects. Front. Cell Infect. Microbiol. 2015; 5: 7.

da Silva Sabo S, Vitolo M, González JMD, de Souza Oliveira RP. Overview of Lactobacillus plantarum as a promising bacteriocin producer among lactic acid bacteria. Food Res. Int. 2014; 64: 527–536.

Donlan RM. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8: 881-90.

Dreno B, Martin R, Moyal D, Henley JB, Khammari A, Seité S. Skin microbiome and acne vulgaris:Staphylococcus, a new actor in acne. Exp. Dermatol. 2017; 26: 798-803.

DrydenM, AndrasevicAT, Bassetti M, Bouza E, Chastre J. et al. Managing skin and soft-tissue infection and nosocomial pneumonia caused by MRSA: A 2014 follow-up survey. Int J Antimicrob Agents. 2015; 45: 1–14.

Huang Y,Luo YB, Zhai ZY, Zhang HX, Yang CX, Tian HT, Hao YL. Characterization and application of an anti Listeria bacteriocin produced by Pediococcus pentosaceus 05–10 isolated from Sichuan Pickle, a traditionally fermented vegetable product from China. Food Control. 2009; 20:1030–1035.

Jung GW, Tse JE, Guiha I, Rao J. Prospective randomized open-label trial comparing the safety, efficacy and tolerability of an acne treatment regimen with and without a probiotic supplement in subjects with mild to moderate acne. J. Cutan. Med. Surg. 2013; 17 (2): 114–122.

Kober MM, Bowe WP. The effect of probiotics on immune regulation, acne, and photoaging. Int J Womens Dermatol. 2015; 1: 85-89.

Mathur H, Field D, Rea MC, Cotter PD, Hill C, Ross RP. Fighting biofilms with lantibiotics and other groups of bacteriocins. npj Biofilms Microbiomes. 2018; 4: 1-13.

Muizzuddin N, Maher W, Sullivan M, Schnittger S, Mammone T. Physiologic effect of a probiotic on the skin. J. Cosmet. Sci. 2012; 63 (6): 385–395.

Nair N, Biswas R, Götz F, Biswas L. Impact ofStaphylococcus aureus on pathogenesis in polymicrobial infections. Infect. Immun.2014; 82:2162-2169.

Ołdak A, Zielińska D, Rzepkowska A, Kołożyn-Krajewska D. Comparison of antibacterial activity of Lactobacillus plantarum strains isolated from two different kinds of regional cheeses from Poland: oscypek and korycinski cheese. BioMed research international. 2017.

Sip A, Więckowicz M, Olejnik-Schmidt A, Grajek W. Anti-Listeria activity of lactic acid bacteria isolated from golka, a regional cheese produced in Poland. Food control. 2012; 26(1):117-124.

Wayah SB, Philip K. Characterization, yield optimization, scale up and biopreservative potential of fermencin SA715, a novel bacteriocin from Lactobacillus fermentum GA715 of goat milk origin. Microbial cell factories. 2018; 17 (1): 125.

Zhang H, Liu L, Hao Y, Zhong S, Liu H, Han T, Xie Y. Isolation and partial characterization of a bacteriocin produced by Lactobacillus plantarum BM-1 isolated from a traditionally fermented Chinese meat product. Microbiol. Immunol. 2013; 57:746-755.


Пристатейна бібліографія ГОСТ


Бактеріологія і вірусологія: Нормативне виробничо-практичне видання. Частина 2. – К.: МНІАЦ мед. статистики, МВЦ «Медінформ», 2014. – 472 с.

Бурцева Г.Н., Сергеев А.Ю., Арзуманян В.Г., Сергеев Ю.Ю. Перифолликулярная микробиота кожи при акне. Часть I. Общие характеристики колонизации и резистентность к системным антибиотикам// Иммунопатология, аллергология, инфектология. – 2013. – №. 2. – С. 84–93.

Лаврик Г.С., Корнійчук О.П., Беседіна А.С., Воробець З.Д. Неокисний шлях метаболізму L-аргініну лімфоцитів периферичної крові у хворих на acnе vulgaris // Regulatory Mechanisms in Biosystems. – 2017. – 8, № 4. – Р. 596–601.

Arciola C.R., Campoccia D., Ravaioli S., Montanaro L. Polysaccharide intercellular adhesin in biofilm: structural and regulatory aspects // Front. Cell. Infect. Microbiol. – 2015. – 5. – Р. 7.

da Silva Sabo S., Vitolo M., González J.M.D., de Souza Oliveira R. P.Overview of Lactobacillus plantarum as a promising bacteriocin producer among lactic acid bacteria // Food Res. Int. – 2014. – № 64. – Р. 527–536.

Donlan R.M. Biofilms: microbial life on surfaces// Emerg. Infect. Dis. – 2002. – №8. – Р. 881–890.

Dreno B., Martin R., Moyal D., Henley J. B., Khammari A., Seité S.Skin microbiome and acne vulgaris:Staphylococcus, a new actor in acne. // Experimental dermatology. – 2017. – 26, № 9. – С. 798–803.

M., Andrasevic A.T, Bassetti M., Bouza E., Chastre J., Baguneid M. et al.Managing skin and soft-tissue infection and nosocomial pneumonia caused by MRSA: A 2014 follow-up survey // Int. J. Antimicrob. Agents. – 2015. – 45. – Р. 1–14.

Huang Y., Luo Y. B., Zhai Z. Y., Zhang H. X., Yang C. X., Tian H. T., Hao Y. L.Characterization and application of an anti Listeria bacteriocin produced by Pediococcus pentosaceus 05–10 isolated from Sichuan Pickle, a traditionally fermented vegetable product from China // Food Control. – 2009. – 20. – Р. 1030– 1035.

Jung G.W., Tse J.E., Guiha I., Rao J. Prospective randomized open-label trial comparing the safety, efficacy and tolerability of an acne treatment regimen with and without a probiotic supplement in subjects with mild to moderate acne // J. Cutan. Med. Surg. –2013. – 17, № 2. – Р. 114–122.

Kober M.M., Bowe W.P. The effect of probiotics on immune regulation, acne, and photoaging // International journal of women's dermatology. – 2015. –1, № 2. – Р. 85–89.

Mathur H., Field D., Rea M.C., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Fighting biofilms with lantibiotics and other groups of bacteriocins // Biofilms Microbiomes. – 2018. – 4. – Р. 1–13.

Muizzuddin N., Maher W., Sullivan M., Schnittger S., Mammone T. Physiologic effect of a probiotic on the skin // J. Cosmet. Sci. – 2012. – 63, № 6. – Р. 385–395.

Nair N., Biswas R., Götz F., Biswas L. Impact of Staphylococcus aureus on pathogenesis in polymicrobial infections // Infection and immunity. – 2014. – 82, № 6. – Р. 2162-2169.

Ołdak A., Zielińska D., Rzepkowska A., Kołożyn-Krajewska D. Comparison of antibacterial activity of Lactobacillus plantarum strains isolated from two different kinds of regional cheeses from Poland: oscypek and korycinski cheese // BioMed Research international. – 2017.

Sip A., Więckowicz M., Olejnik-Schmidt A., Grajek W. Anti-Listeria activity of lactic acid bacteria isolated from golka, a regional cheese produced in Poland // Food control. – 2012. – 26, № 1. – Р. 117–124.

Wayah S. B., Philip K. Characterization, yield optimization, scale up and biopreservative potential of fermencin SA715, a novel bacteriocin from Lactobacillus fermentum GA715 of goat milk origin. Microbial cell factories. – 2018. – 17, № 1. – Р. 125.

Zhang H., Liu L., Hao Y., Zhong S., Liu H., Han T., Xie Y. Isolation and partial characterization of a bacteriocin produced by Lactobacillus plantarum BM-1 isolated from a traditionally fermented Chinese meat product // Microbiol. Immunol. – 2013. – 57. – Р. 746–755.





Creative Commons License
Ця робота ліцензована Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

ISSN 2076-0558 (Print); 2307-4663 (Online)

DOI 10.18524/2307-4663