ОПТИМІЗАЦІЯ ЖИВИЛЬНОГО СЕРЕДОВИЩА ДЛЯ ПЕРВИННИХ ЕТАПІВ МІКРОКЛОНАЛЬНОГО РОЗМНОЖЕННЯ IN VITRO ВОЛОСЬКОГО ГОРІХУ

Автор(и)

  • Н. І. Теслюк Одеський національний університет імені І. І. Мечникова, Ukraine
  • М. Л. Литвин Одеський національний університет імені І. І. Мечникова, Ukraine
  • Т. В. Гудзенко Одеський національний університет імені І. І. Мечникова, Ukraine

DOI:

https://doi.org/10.18524/2307-4663.2022.3(56).265806

Ключові слова:

мікроклональне розмноження, волоський горіх, культура in vitro, експлант, живильне середовище

Анотація

Мета роботи: оптимізація процесів мікроклонального розмноження волоського горіху (Juglans regia) in vitro шляхом добору складу та консистенції живильного середовища. Матеріали і методи. У роботі використовували методи введення ініціальних експлантів в культуру in vitro і мікроклонального розмноження. Застосовували ініціальні експланти – частини стебла і бруньки молодих паростків волоського горіху, пророщені міні-тепличним методом з плодів Juglans regia. Для введення експлантів Juglans regia в культуру in vitro використовували живильні середовища Murashige&Skoog (MS) та Driver&Kuniyuki (DKW). Як желювальний агент використано агар (7 г/л – тверде середовище). До напіврідкого середовища додавали 3,5 г/л агару, рідке – без додавання агару. Всі дослідні варіанти середовищ модифікували додаванням фітогормону цитокінінового ряду 6-БАП. Контроль рН середовища здійснювали на рівні 7,1–7,2. Культивували введені у культуру експланти при температурі +25 оС, інтенсивності освітлювання 2500 лк, відносній вологості 56–70% та фотоперіоді 16 годин – день, 8 годин – ніч. На 3-й, 7-й, 11-й день враховували показники приживлюваності, росту та розвитку ініціальних експлантів. Результати. Встановлено, що оптимальним живильним середовищем для введення у культуру та культивування волоського горіху в умовах in vitro є середовище DKW, на якому спостерігався високий відсоток приживлюваності експлантів (80%), а також прискорене набухання бруньок та їх проліферація. Запропоновано використовувати напіврідкі живильні середовища для введення ініціальних експлантів волоського горіху в культуру in vitro. Застосування напіврідкого живильного середовища DKW для первинних етапів введення волоського горіху в культуру in vitro сприяло прискоренню процесів мікроклонального розмноження цієї культури на 2 дні і покращенню приживлюваності на 20 % у порівнянні з твердим середовищем. Висновок. Рекомендовано застосування напіврідкого живильного середовища DKW для введення у культуру та культивування волоського горіху в умовах in vitro для збільшення показників приживлюваності експлантів на 20%, а також прискореній активації бруньок (2 дні) та їх подальшої проліферації.

Посилання

Zarnadze NZh, Lomtatydze ND, Zarnadze RZh. Varshanidze NI, Dzhaparidze ZT. Microclonal propagation of the Juglans regia L. through somatic embryogenesis. Visn. Ukraine Society of Geneticists and Breeders. 2008; 6 (1): 60–64 (in Rus-sian).

Zatokovyi FT, Satina LF, Saiko VI. Osnovni pidsumky doslidzhen henofondu hor-ikha hretskoho na Bukovyni. Sadivnytstvo: mizhvid. temat. nauk. 2006; 58: 46–51 (in Ukrainian).

Tesliuk NI, Lytvyn ML. Klonalne mikrorozmnozhennia Juglans regia v kulturi in vitro. Problemy ta perspektyvy realizatsii ta vprovadzhen mizhdystsyplinarnykh naukovykh dosiahnen. 2021; 66–69 (in Ukrainian).

Tesliuk NI, Lytvyn ML. Rozrobka pidhotovchoho etapu mikroklonalnoho rozm-nozhennia Juglans regia v kulturi in vitro. Biolohichni protsesy optymizatsii produktsiinoho protsesu kulturnykh roslyn. 2021; 39–41 (in Ukrainian).

Titarenko TIe, Medvedieva TV, Satina HM. Rozmnozhennia bukovynskykh sortiv horikha hretskoho (Juglans regia L.) 2009; 6: 22–29 (in Ukrainian).

Driver JA, Kuniyuki AH. In vitro propagati on of Paradox Walnutroot stock. Hort. Sci., 1984; 19.

Ishtiaq A, Tanveer H, Irfan A, Nafees M, Rafay M, Iqbal M. Lethal Effects of Sec-ondary Metabolites on Plant Tissue Culture. American-Eurasian J. Agric. & Envi-ron. Sci. 2013; 13(4): 539–547.

Kaur R, Kumar K, Sharma DR. In vitro germination of walnut (Juglans regia L.) embryos. Sci. Hortic, 2006; 109 p.

Kepeneka K, Kolagasib Z. Micropropagati on of Walnut (Juglans regia L.) Special-issue of the 2nd International Conferenceon Computational and Experimental Sci-ence and Engineering (ICCESEN 2015). 2016; 130.

Optimizing the concentrations of plant growth regulators for in vitroshoot cultures, callus induction and shoot regeneration from calluses of grapes. J. Int. Sci. Vigne Vin. 2015; (49): 37–45.

Navatel JC, Bourrain L. Plant production of walnut Juglans regia L. by in vitro multiplication. Acta Hort. (ISHS). 2001; 465–471.

Payghamzadeh K, Kazemitabar SK. In vitro propagation of walnut. African Journal of Biotechnology. 2011; (2): 290–311.

Saadat YA, Hennerty MJ. Factors affecting the shoot multiplication of Persian wal-nut (Juglans regia L.). Scientia Horticulturae. 2002; 95 (3): 251–260.

Taghizadeh M, Ganji Dastjerdi, Mahboubeh. Inhibition of browning problem dur-ing the callogenesis of Spartium junceum L. Ornamental Horticulture. 2021; 27. 68–77. 10.1590/2447-536x.v27i1.2230

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-12-28

Номер

Розділ

ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНІ ПРАЦІ