МОРСЬКІ МІКСОБАКТЕРІЇ – УНІКАЛЬНА ГРУПА З ВИСОКИМ БІОСИНТЕТИЧНИМ ПОТЕНЦІАЛОМ
DOI:
https://doi.org/10.18524/2307-4663.2025.3(65).344039Ключові слова:
міксобактерії, морські міксобактерії, біоактивні вторинні метаболіти, гідролітичні ферментиАнотація
Необхідність у нових антимікробних препаратах зумовлює пошук нових біологічно активних речовин. Найперспективнішим джерелом і ресурсом для інноваційних біоактивних натуральних продуктів є і залишаються бактерії, серед яких чільне місце посідають міксобактерії. Огляд присвячено особливостям біології міксобактерій, які відомі не лише своїм складним хижацьким способом життя, але й, що ще важливіше, своєю здатністю синтезувати позаклітинні гідролітичні ферменти і різноманітні вторинні метаболіти, структурні особливості та механізм дії багатьох із яких є унікальним. Особливу увагу приділено галофільним/галотолерантним міксобактеріям, виділеним із морського середовища, які, за даними геномно-метаболомного аналізу, мають потужний біосинтетичний потенціал і є перспективним джерелом нових сполук з різноманітним біоактивним спектром та унікальним механізмом дії.
Посилання
Fomin OO, Fomina NS, Kovalchuk VP, Aslanian SA. Mikroflora suchasnoi boiovoi rany ta yii chutlyvist do antybiotykiv. Chastyna I [Microflora of a modern combat wound and its sensitivity to antibiotics. Part I]. Ukr. Med. Chasopys. 2023;3(155),V/VI:82–85. https://doi.org/10.32471/umj.1680-3051.155.244023 [in Ukrainian].
Ahmed SK, Hussein S, Qurbani K, Ibrahim RH, Fareeq A et al. Antimicrobial resistance: impacts, challenges, and future prospects. Journal of Medicine, Surgery, and Public Health. 2024;2:1–9. https://doi.org/10.1016/j.glmedi.2024.100081
Albataineh H, Stevens DC. Marine myxobacteria: a few good halophiles. Mar Drugs. 2018;16(6):1–11. https://doi.org/10.3390/md16060209
Berleman JE, Kirby JR. Deciphering the hunting strategy of a bacterial wolfpack. FEMS Microbiol Rev. 2009;33(5):942–957. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2009.00185.x
Bhat MA, Mishra AK, Bhat MA, Banday MI, Bashir O et al. Myxobacteria as a source of new bioactive compounds: a perspective study. Pharmaceutics. 2021;13(8):1265. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13081265
Brinkhoff T, Fischer D, Vollmers J, Voget S, Beardsley C et al. Biogeography and phylogenetic diversity of a cluster of exclusively marine myxobacteria. The ISME Journal. 2012;6(6):1260–1272. https://doi.org/10.1038/ismej.2011.190
Chan YA, Podevels AM, Kevany BM, Thomas MG. Biosynthesis of polyketide synthase extender units. Nat Prod Rep. 2009;26(1):90–114. https://doi.org/10.1039/b801658p
Chanana S, Braun DR, Rajski SR, Bugni TS. Draft genome sequence of Pseudenhygromyxa sp. strain WMMC2535, a marine ascidian-associated bacterium. Microbiol Resour Announc. 2020;9(34):e00657–20. https://doi.org/10.1128/MRA.00657-20
Chen J, Nan B. Flagellar motor transformed: biophysical perspectives of the Myxococcus xanthus gliding mechanism. Front Microbiol. 2022;13:891694. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.891694
Dávila-Céspedes A, Hufendiek P, Crüsemann M, Schäberle TF, König GM. Marine-derived myxobacteria of the suborder Nannocystineae: an underexplored source of structurally intriguing and biologically active metabolites. Beilstein J. Org. Chem. 2016;12:969–984. https://doi.org/10.3762/bjoc.12.96
Dawid W. Biology and global distribution of myxobacteria in soils. FEMS Microbiol Rev. 2000;24(4):403–427. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2000.tb00548.x
Delgado-Baquerizo M, Oliverio AM, Brewer TE, Benavent-González A, Eldridge DJ et al. A global atlas of the dominant bacteria found in soil. Science. 2018;359(6373):320–325. https://doi.org/10.1126/science.aap9516
Felder S, Dreisigacker S, Kehraus S, Neu E, Bierbaum G et al. Salimabromide: unexpected chemistry from the obligate marine myxobacterium Enhygromxya salina. Chemistry. 2013;19(28):9319–9324. https://doi.org/10.1002/chem.201301379
Felder S, Kehraus S, Neu E, Bierbaum G, Schäberle TF, König GM. Salimyxins and enhygrolides: antibiotic, sponge-related metabolites from the obligate marine myxobacterium Enhygromyxa salina. ChemBioChem. 2013;14(11):1363–1371. https://doi.org/10.1002/cbic.201300268
Fudou R, Iizuka T, Yamanaka S. Haliangicin, a novel antifungal metabolite produced by a marine myxobacterium. 1. Fermentation and biological characteristics. J Antibiot (Tokyo). 2001;54(2):149–152. https://doi.org/10.7164/antibiotics.54.149
Fudou R, Iizuka T, Sato S, Ando T, Shimba N, Yamanaka S. Haliangicin, a novel antifungal metabolite produced by a marine myxobacterium. 2. Isolation and structural elucidation. J Antibiot (Tokyo). 2001;54(2):153–156. https://doi.org/10.7164/antibiotics.54.153
Fudou R, Jojima Y, Iizuka T, Yamanaka S. Haliangium ochraceum gen. nov., sp. nov. and Haliangium tepidum sp. nov.: novel moderately halophilic myxobacteria isolated from coastal saline environments. J Gen Appl Microbiol. 2002;48(2):109–116. https://doi.org/10.2323/jgam.48.109
Furness E, Whitworth DE, Zwarycz A. Predatory interactions between myxobacteria and their prey / In: E Jurkevitch, R Mitchell, eds. The ecology of predation at the microscale. Cham: Springer; 2020. p. 1–36. https://doi.org/10.1007/978-3-030-45599-6_1
Gan K-J, Zhu Y, Shi G, Wu C, Ni F-Q. Evolution of the short enantioselective total synthesis of the unique marine myxobacteria polyketide salimabromide. Chin. J. Chem. 2024;42:1–13. https://doi.org/10.1002/cjoc.202400XXX
Garcia R, Pistorius D, Stadler M, Müller R. Fatty acid-related phylogeny of myxobacteria as an approach to discover polyunsaturated omega-3/6 fatty acids. J Bacteriol. 2011;193(8):1930–1942. https://doi.org/10.1128/JB.01091-10
Garcia R, La Clair JJ, Müller R. Future directions of marine myxobacterial natural product discovery inferred from metagenomics. Mar Drugs. 2018;16(9):303. https://doi.org/10.3390/md16090303
Gemperlein K, Zaburannyi N, Garcia R, La Clair JJ, Müller R. Metabolic and biosynthetic diversity in marine myxobacteria. Mar Drugs. 2018;16(9):314. https://doi.org/10.3390/md16090314
Gerth K, Müller R. Moderately thermophilic myxobacteria: novel potential for the production of natural products isolation and characterization. Environ Microbiol. 2005;7(6):874–880. https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2005.00761.x
Han K, Li Zf, Peng R, Zhu Lp, Zhou T et al. Extraordinary expansion of a Sorangium cellulosum genome from an alkaline milieu. Sci Rep. 2013;3:2101. https://doi.org/10.1038/srep02101
Herrmann J, Abou Fayad A, Müller R. Natural products from myxobacteria: novel metabolites and bioactivities. Nat. Prod. Rep. 2017;34:135–160. https://doi.org/10.1039/C6NP00106H
Hesseler M, Bogdanović X, Hidalgo A, Berenguer J, Palm GJ et al. Cloning, functional expression, biochemical characterization, and structural analysis of a haloalkane dehalogenase from Plesiocystis pacifica SIR-1. Appl Microbiol Biotechnol. 2011;91(4):1049–1060. https://doi.org/10.1007/s00253-011-3328-x
Hug JJ, Kjaerulff L, Garcia R, Müller R. New deoxyenhygrolides from Plesiocystis pacifica provide insights into butenolide core biosynthesis. Mar. Drugs. 2022;20(1):72. https://doi.org/10.3390/md20010072
Iizuka T, Jojima Y, Fudou R, Yamanaka S. Isolation of myxobacteria from the marine environment. FEMS Microbiology letters. 1998;169(2):317–322. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1998.tb13335.x
Iizuka T, Jojima Y, Fudou R, Tokura M, Hiraishi A, Yamanaka S. Enhygromyxa salina gen. nov., sp. nov., a slightly halophilic myxobacterium isolated from the coastal areas of Japan. Syst Appl Microbiol. 2003;26(2):189–196. https://doi.org/10.1078/072320203322346038
Iizuka T, Jojima Y, Fudou R, Hiraishi A, Ahn JW, Yamanaka S. Plesiocystis pacifica gen. nov., sp. nov., a marine myxobacterium that contains dihydrogenated menaquinone, isolated from the Pacific coasts of Japan. Int J Syst Evol Microbiol. 2003;53(Pt 1):189–195. https://doi.org/10.1099/ijs.0.02418-0
Iizuka T, Fudou R, Jojima Y, Ogawa S, Yamanaka S et al. Miuraenamides A and B, novel antimicrobial cyclic depsipeptides from a new slightly halophilic myxobacterium: taxonomy, production, and biological properties. J. Antibiot. 2006;59(7):385–391. https://doi.org/10.1038/ja.2006.55
Iizuka T, Tokura M, Jojima Y, Hiraishi A, Yamanaka S, Fudou R. Enrichment and phylogenetic analysis of moderately thermophilic myxobacteria from hot springs in Japan. Microbes Environ. 2006;21(3):189–199. https://doi.org/10.1264/jsme2.21.189
Iizuka T, Jojima Y, Hayakawa A, Fujii T, Yamanaka S, Fudou R. Pseudenhygromyxa salsuginis gen. nov., sp. nov., a myxobacterium isolated from an estuarine marsh. Int J Syst Evol Microbiol. 2013:63(Pt 4):1360–1369. https://doi.org/10.1099/ijs.0.040501-0
Ivanova N, Daum C, Lang E, Abt B, Kopitz M et al. Complete genome sequence of Haliangium ochraceum type strain (SMP-2). Stand Genomic Sci. 2010;2(1):96–106. https://doi.org/10.4056/sigs.69.1277
Kaiser D. Coupling cell movement to multicellular development in myxobacteria. Nat Rev Microbiol. 2003;1(1):45–54. https://doi.org/10.1038/nrmicro733
Kaiser D. Myxococcus – from single-cell polarity to complex multicellular patterns. Annu Rev Genet. 2008;42:109–130. https://doi.org/10.1146/annurev.genet.42.110807.091615
Kimura Y, Kawasaki S, Yoshimoto H, Takegawa K. Glycine betaine biosynthesized from glycine provides an osmolyte for cell growth and spore germination during osmotic stress in Myxococcus xanthus. J Bacteriol. 2010;192(5):1467–1470. https://doi.org/10.1128/JB.01118-09
Komaki H, Fudou R, Iizuka T, Nakajima D, Okazaki K et al. PCR detection of type I polyketide synthase genes in myxobacteria. Appl Environ Microbiol. 2008;74(17):5571–5574. https://doi.org/10.1128/AEM.00224-08
Kudo K, Yamaguchi N, Makino T, Ohtsuka T, Kimura K et al. Release of arsenic from soil by a novel dissimilatory arsenate-reducing bacterium, Anaeromyxobacter sp. strain PSR-1. Appl Environ Microbiol. 2013;79(15):4635–4642. https://doi.org/10.1128/AEM.00693-13
Kundim BA, Itou Y, Sakagami Y, Fudou R, Iizuka T et al. New haliangicin isomers, potent antifungal metabolites produced by a marine myxobacterium. J Antibiot (Tokyo). 2003;56(7):630–638. https://doi.org/10.7164/antibiotics.56.630
Landwehr W, Wolf C, Wink J. Actinobacteria and Myxobacteria – two of the most important bacterial resources for novel antibiotics. Curr Top Microbiol Immunol. 2016;398:273–302. https://doi.org/10.1007/82_2016_503
Li B, Yao Q, Zhu H. Approach to analyze the diversity of myxobacteria in soil by semi-nested PCR-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) based on taxon-specific gene. PLoS One. 2014;9(10):108877. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0108877
Li SG, Zhou XW, Li PF, Han K, Li W et al. The existence and diversity of myxobacteria in lake mud – a previously unexplored myxobacteria habitat. Environ Microbiol Rep. 2012;4(6):587–595. https://doi.org/10.1111/j.1758-2229.2012.00373.x
Li Y-Z, Hu W, Zhang Y-Q, Qiu Z, Zhang Y, Wu BH. A simple method to isolate salt-tolerant myxobacteria from marine samples. J Microbiol Methods. 2002;50(2):205–209. https://doi.org/10.1016/s0167-7012(02)00029-5
Li Z, Zhang L, Ye X, Huang Y, Ji Y et al. Myxobacteria: versatile cell factories of novel commercial enzymes for bio-manufacturing. Biotechnology advances. 2025;82:108594. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2025.108594
Liu Y, Ojika M. Genomic analysis of the rare slightly halophilic myxobacterium Paraliomyxa miuraensis SMH-27-4, the producer of the antibiotic miuraenamide A. Microorganisms. 2023;11(2):371. https://doi.org/10.3390/microorganisms11020371
Marcos-Torres FJ, Volz C, Müller R. An ambruticin-sensing complex modulates Myxococcus xanthus development and mediates myxobacterial interspecies communication. Nat Commun. 2020;11:5563. https://doi.org/10.1038/s41467-020-19384-7
Marshall RC, Whitworth DE. Is “Wolf-Pack” predation by antimicrobial bacteria cooperative? Cell behaviour and predatory mechanisms indicate profound selfishness, even when working alongside kin. Bioessays. 2019;41(4):e1800247. https://doi.org/10.1002/bies.201800247
Meiser P, Bode HB, Müller R. The unique DKxanthene secondary metabolite family from the myxobacterium Myxococcus xanthus is required for developmental sporulation. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103(50):19128–19133. https://doi.org/10.1073/pnas.0606039103
Meng K, Jiang W, Cai H, Yang Z, Yuan Y, Su Z. Diversity of myxobacteria isolated from Weizhou Island, Guangxi, and their potential biological activities. Arch Biol Sci. 2025;77(2):123–36. https://doi.org/10.2298/ABS250324010M
Miyanaga A, Kudo F, Eguchi T. Protein–protein interactions in polyketide synthase–nonribosomal peptide synthetase hybrid assembly lines. Nat. Prod. Rep. 2018;35:1185–1209. https://doi.org/10.1039/C8NP00022K
Moghaddam JA, Boehringer N, Burdziak A, Kunte HJ, Galinski EA, Schäberle TF. Different strategies of osmoadaptation in the closely related marine myxobacteria Enhygromyxa salina SWB007 and Plesiocystis pacifica SIR-1. Microbiology (Reading). 2016;162(4):651–661. https://doi.org/10.1099/mic.0.000250
Moghaddam AJ, Crüsemann M, Alanjary M, Harms H, Dávila-Céspedes A et al. Analysis of the genome and metabolome of marine myxobacteria reveals high potential for biosynthesis of novel specialized metabolites. Sci Rep. 2018;8(1):16600. https://doi.org/10.1038/s41598-018-34954-y
Moghaddam AJ, Poehlein A, Fisch K, Alanjary M, Daniel R et al. Draft genome sequences of the obligatory marine myxobacterial strains Enhygromyxa salina SWB005 and SWB007. Genome Announc. 2018;6(17):e00324-18. https://doi.org/10.1128/genomeA.00324-18
Mohr KI. Diversity of myxobacteria – we only see the tip of the iceberg. Microorganisms. 2018;6(3):84. https://doi.org/10.3390/microorganisms6030084
Murphy P, Comstock J, Khan T, Zhang J, Welch R, Igoshin OA. Cell behaviors underlying Myxococcus xanthus aggregate dispersal. mSystems. 2023;8(5):e00425-00423. https://doi.org/10.1128/msystems.00425-23
Ojika M, Inukai Y, Kito Y, Hirata M, Iizuka T, Fudou R. Miuraenamides: antimicrobial cyclic depsipeptides isolated from a rare and slightly halophilic myxobacterium. Chem Asian J. 2008;3(1):126–133. https://doi.org/10.1002/asia.200700233
Payne JAE, Schoppet M, Hansen MH, Cryle MJ. Diversity of nature’s assembly lines – recent discoveries in non-ribosomal peptide synthesis. Mol. BioSyst. 2017;13:9–22. https://doi.org/10.1039/C6MB00675B
Ravenschlag K, Sahm K, Pernthaler J, Amann R. High bacterial diversity in permanently cold marine sediments. Appl Environ Microbiol. 1999;65(9):1–8. https://doi.org/10.1128/AEM.65.9.3982-3989.1999
Ronald G, La Clair JJ, Müller R. Future directions of marine myxobacterial natural product discovery inferred from metagenomics. Mar. Drugs. 2018;16(9):303. https://doi.org/10.3390/md16090303
Saggu SK, Nath A, Kumar S. Myxobacteria: biology and bioactive secondary metabolites. Research in Microbiology. 2023;174:104079. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2023.104079
Saha S. Exploring myxobacteria for drugs. World Journal of Pharmaceutical and Life Sciences. 2024;10(6):289–315. https://www.wjpls.org/download/article/108052024/1717497743.pdf
Salmanov AG, Shchehlov DV, Mamonova M, Shcheholkov YE, Litus VI et al. Healthcare associated infections in patients with combat wounds and antimicrobial resistance of the responsible pathogens in Ukraine: results of a multicenter study (2022-2024). Wiad Lek. 2025;78(8):1624–1634. https://doi.org/10.36740/WLek/209517
Sanford RA, Cole JR, Tiedje JM. Characterization and description of Anaeromyxobacter dehalogenans gen. nov., sp. nov., an aryl-halorespiring facultative anaerobic myxobacterium. Appl Environ Microbiol. 2002;68(2):893–900. https://doi.org/10.1128/AEM.68.2.893-900.2002
Schäberle TF, Goralski E, Neu E, Erol Ö, Hölzl G et al. Marine myxobacteria as a source of antibiotics – comparison of physiology, polyketide-type genes and antibiotic production of three new isolates of Enhygromyxa salina. Mar. Drugs. 2010;8(9):2466–2479. https://doi.org/10.3390/md8092466
Schäberle TF, Lohr F, Schmitz A, König GM. Antibiotics from myxobacteria. Nat. Prod. Rep. 2014;31:953–972. https://doi.org/10.1039/C4NP00011K
Shrivastava A, Sharma RK. Myxobacteria and their products: current trends and future perspectives in industrial applications. Folia Microbiol (Praha). 2021;66(4):483–507. https://doi.org/10.1007/s12223-021-00875-z
Sorokoumova LK, Kozhokaru AA, Yaremin SYu, Zhorniak OI. Monitoring of the dynamics of antimicrobial resistance among wounded in the conditions of armed conflict. Ukrainian Journal of Military Medicine. 2025;6(2):105–110. https://doi.org/10.46847/ujmm.2025.2(6)-105
Sumiya E, Shimogawa H, Sasaki H, Tsutsumi M, Yoshita K et al. Cell-morphology profiling of a natural product library identifies bisebromoamide and miuraenamide A as actin filament stabilizers. ACS Chem Biol. 2011;6(5):425–431. https://doi.org/10.1021/cb1003459
Sun Y, Feng Z, Tomura T, Suzuki A, Miyano S et al. Heterologous production of the marine myxobacterial antibiotic haliangicin and its unnatural analogues generated by engineering of the biochemical pathway. Sci Rep. 2016;6:22091. https://doi.org/10.1038/srep22091
Sun Y, Tomura T, Sato J, Iizuka T, Fudou R, Ojika M. Isolation and biosynthetic analysis of haliamide, a new PKS-NRPS hybrid metabolite from the marine myxobacterium Haliangium ochraceum. Molecules. 2016;21(1):59. https://doi.org/10.3390/molecules21010059
Swetha RG, Arakal BS, Rajendran S, Sekar K, Whitworth DE et al. MyxoPortal: a database of myxobacterial genomic features. Database. 2024;2024:baae056. https://doi.org/10.1093/database/baae056
Timmermans ML, Paudel YP, Ross AC. Investigating the biosynthesis of natural products from marine proteobacteria: a survey of molecules and strategies. Mar Drugs. 2017;15(8):235. https://doi.org/10.3390/md15080235
Tomura T, Nagashima S, Yamazaki S, Iizuka T, Fudou R, Ojika M. An unusual diterpene—enhygromic acid and deoxyenhygrolides from a marine myxobacterium, Enhygromyxa sp. Mar. Drugs. 2017;15(4):109. https://doi.org/10.3390/md15040109
Treude N, Rosencrantz D, Liesack W, Schnell S. Strain FAc12, a dissimilatory iron-reducing member of the Anaeromyxobacter subgroup of Myxococcales. FEMS Microbiol Ecol. 2003;44(2):261–269. https://doi.org/10.1016/S0168-6496(03)00048-5
Wang B, Hu W, Liu H, Zhang CY, Zhao JY et al. Adaptation of salt-tolerant Myxococcus strains and their motility systems to the ocean conditions. Microb Ecol. 2007;54(1):43–51. https://doi.org/10.1007/s00248-006-9169-y
Wang C, Xiao Y, Wang Y, Liu Y, Yao Q, Zhu H. Comparative genomics and transcriptomics insight into myxobacterial metabolism potentials and multiple predatory strategies. Front Microbiol. 2023;14:1146523. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1146523
Wang D-G, Wang C-Y, Hu J-Q, Wang J-J, Liu W-C. Constructing a myxobacterial natural product database to facilitate NMR-based metabolomics bioprospecting of myxobacteria. Anal. Chem. 2023;95(12):5256–5266. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.2c05145
Wang C-Y, Hu J-Q, Wang D-G, Li Y-Z, Wu C. Recent advances in discovery and biosynthesis of natural products from myxobacteria: an overview from 2017 to 2023. Nat. Prod. Rep. 2024;41:905–934. https://doi.org/10.1039/D3NP00062A
Weissman KJ, Müller R. Myxobacterial secondary metabolites: bioactivities and modes-of-action. Nat Prod Rep. 2010;27(9):1276–1295. https://doi.org/10.1039/c001260m
Whitworth DE, Jurkevitch E, Pérez J, Fuhrmann G, Koval SF. Editorial: mechanisms of prokaryotic predation. Front. Microbiol. 2020;11:2071. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.02071
Wrótniak-Drzewiecka W, Brzezińska AJ, Dahm H, Ingle AP, Rai M. Current trends in myxobacteria research. Ann Microbiol. 2016;66:17–33. https://doi.org/10.1007/s13213-015-1104-3
Wu D, Hugenholtz P, Mavromatis K, Pukall R, Dalin E et al. A phylogeny-driven genomic encyclopaedia of bacteria and archaea. Nature. 2009;462(7276):1056–1060. https://doi.org/10.1038/nature08656
Xiao Y, Wei X, Ebright R, Wall D. Antibiotic production by myxobacteria plays a role in predation. J Bacteriol. 2011;193(18):4626–4633. https://doi.org/10.1128/jb.05052-11
Xiao Y, Gerth K, Müller R, Wall D. Myxobacterium-produced antibiotic TA (myxovirescin) inhibits type II signal peptidase. Antimicrob Agents Chemother. 2012;56(4):2014–2021. https://doi.org/10.1128/AAC.06148-11
Yamamoto E, Muramatsu H, Nagai K. Vulgatibacter incomptus gen. nov., sp. nov. and Labilithrix luteola gen. nov., sp. nov., two myxobacteria isolated from soil in Yakushima Island, and the description of Vulgatibacteraceae fam. nov., Labilitrichaceae fam. nov. and Anaeromyxobacteraceae fam. nov. Int J Syst Evol Microbiol. 2014;64(Pt 10):3360–3368. https://doi.org/10.1099/ijs.0.063198-0
Zhang YQ, Li YZ, Wang B, Wu ZH, Zhang CY et al. Characteristics and living patterns of marine myxobacterial isolates. Appl Environ Microbiol. 2005;71(6):3331–3336. https://doi.org/10.1128/AEM.71.6.3331-3336.2005
Zusman DR, Scott AE, Yang Z, Kirby JR. Chemosensory pathways, motility and development in Myxococcus xanthus. Nat Rev Microbiol. 2007;5(11):862–872. https://doi.org/10.1038/nrmicro1770
List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature (LPSN). https://lpsn.dsmz.de
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2025 В. Ю. Іваніца, І. В. Страшнова
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Автор передає журналу (університету) на безоплатній основі невиключні права на використання статті (на весь строк дії авторського права починаючи з моменту публікації, розміщення статті на веб-сторінці журналу, в репозитарії відкритого доступу) без одержання прибутку; на відтворення статті чи її частин в електронній формі (включаючи цифрову); виготовлення ії електронних копій для постійного архівного зберігання; виготовлення електронних копій статті для некомерційного розповсюдження; внесення статті до бази даних репозитарію; надання електронних копій статті в доступі мережі інтернет.
Автор гарантує, що у статті не використовувалися статті або авторські права, які належать третім особам; гарантує, що на момент розміщення статті на веб-сторінці, в репозитарії ОНУ лише йому належать виключні майнові права на статтю, що розміщується; майнові права на статтю ні повністю, ні в частині нікому не передано (не відчуджено), майнові права на статтю ні повністю, ні в частині не є предметом застави, судового спору або претензій з боку третіх осіб.
Автор зберігає за собою право використовувати самостійно чи передавати права на використання статті третім особам.
Автор надає журналу право на використання статті такими способами:
переробляти, адаптувати або іншим чином змінювати її за погодженням з автором; перекладати статтю у випадку, коли стаття викладена мовою іншою, ніж мова, якою передбачена публікація у виданні. Якщо журнал виявить бажання використовувати статтю іншими способами: перекладати, розміщувати повністю або частково у мережі інтернет, публікувати статтю в інших, в тому числі іноземних виданнях, включати статтю як складову частину до інших збірників, антологій, енциклопедій тощо, умови оформлюються додатковою угодою.
Автор підтверджує, що він є автором (співавтором) цієї статті; авторські права на дану статтю не передані іншому видавцю; дана стаття не була раніше опублікована у будь-якому іншому виданні до публікації її журналом.
Публікація праць в Журналі здійснюється на некомерційній основі. Комісійна плата за оформлення статті не стягується.
