АКТИВНІСТЬ І КІНЕТИЧНІ ВЛАСТИВОСТІ СУПЕРОКСИДДИСМУТАЗИ СУЛЬФАТВІДНОВЛЮВАЛЬНИХ БАКТЕРІЙ DESULFOVIBRIO PIGER VIB-7 ТА DESULFOMICROBIUM SP. ROD-9

Автор(и)

  • І. В. Кушкевич Інститут біології тварин НААН України, вул. В. Стуса, Україна
  • Г. Л. Антоняк Львівський національний університет імені Івана Франка, Україна https://orcid.org/0000-0002-1640-737X
  • Р. В. Фафула Львівський національний медичний університет імені Данила Галицького, Україна

DOI:

https://doi.org/10.18524/2307-4663.2014.4(28).48409

Ключові слова:

сульфатвідновлювальні бактерії, активність супероксиддисмутази, кінетичні властивості

Анотація

Метою роботи було дослідження активності супероксиддисмутази безклітинних екстрактів Desulfovibrio piger Vib-7 і Desulfomicrobium sp. Rod-9, виділених з товстого кишечника людини, і проведення аналізу кінетичних властивостей ензиматичної реакції. Методи. Використано мікробіологічні, біохімічні, біофізичні методи досліджень і методи статистичної обробки результатів. Результати. Досліджено питому активність супероксиддисмутази сульфатвідновлювальних бактерій. Показано вплив різної температури, рН та концентрації субстрату на активність досліджуваного ензиму. На основі експериментальних даних, проведено аналіз кінетичних властивостей супероксиддисмутази досліджуваних бактеріальних штамів. Розраховано початкову (миттєву) швидкість реакції (V0), максимальну швидкість ензиматичної реакції (Vmax), і константи Міхаеліса (Км) реакції супероксиддисмутази для обох штамів. Висновок. Кінетичні параметри реакції супероксиддисмутази обох штамів бактерій статистично не відрізнялися. Отримані дані про вплив оптимуму рН (7,5–9,5) на активність ферменту узгоджуються зі значенням рН у товстому кишечнику людини. Ці умови забезпечують інтенсивний ріст бактеріальних штамів, процес дисиміляційного відновлення сульфату і, відповідно, накопичення гідроген сульфіду у кишечнику.

Посилання

Bailey N.T.J. Statistical Methods in Biology. Cambridge University Press. – 1995. – 255 p.

Barton L.L., Hamilton W.A. Sulphate-Reducing Bacteria. Environmental and Engineered Systems. Cambridge: Cambridge University Pres. – 2010. – 553 p.

Beavchamp C., Fridovich I. Superoxide dismutase: improved assays and an assay apliciable to acrylamide gels // Anal. Biochem. – 1971. – 44(1). – P. 276–287.

Brioukhanov A.L., Thauer R.K., Netrusov A.I. Catalase and Superoxide Dismutase in the Cells of Strictly Anaerobic Microorganisms // Microbiology. –2002. – 71(3).– P. 330–335.

Brioukhanov A.L., Netrusov A.I. Catalase and Superoxide Dismutase: Distribution, Properties, and Physiological Role in Cells of Strict Anaerobes // Biochemistry. – 2004. – 69(9). – P. 949–962.

Dannenberg S., Kroder M., Dilling W., Cypionka H. Oxidation of H2, organic compounds and inorganic sulfur compounds coupled to reduction of O2 or nitrate by sulfate-reducing bacteria // Arch. Microbiol. – 1992. –158. – P. 93–99.

Fridovich I. Superoxide Radical and Superoxide Dismutases // Annu. Rev. Biochem. – 1995. – 64. – P. 97–112.

Gudelj M., Fruhwirth G.O., Paar A. et al. A catalase-peroxidase from a newly isolated thermoalkaliphilic Bacillus sp. with potential for the treatment of textile bleaching effluents // Extremophiles. – 2001. – 5.– P. 423–429.

Ito T., Nielsen J.L., Okabe S., Watanabe Y., Nielsen P.H. Phylogenetic identification and substrate uptake patterns of sulfatereducing bacteria inhabiting an oxic-anoxic sewer biofilm determined by combining microautoradiography and FISH // Appl. Environ. Microbiol. – 2002. – 68.– P. 356–364.

Keleti T. Basic Enzyme Kinetics. – Akademiai Kiado. – 1988. – 422 p.

Krekeler D., Teske A., and Cypionka H. Strategies of sulfate-reducing bacteria to escape oxygen stress in a cyanobacterial mat // FEMS Microbiol. Ecol. – 1998. – 25(2).– P. 89–96.

Kushkevych I.V. Sulfate-reducing bacteria of the human intestine. II. The role in the diseases development // Sci. Int. J. Biological studies/Studia Biologica. – 2012. – 6 (2).– P. 221–250. (in Ukrainian)

Kushkevych I.V. Identification of sulfate-reducing bacteria strains of human large intestine // Sci. Int. J. Biological studies/Studia Biologica. – 2013. – 7(3). – P. 115–124.

Kushkevych I.V., Bartoš M., Bartošová L. Sequence analysis of the 16S rRNA gene of sulfate-reducing bacteria isolated from human intestine // Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. – 2014. – 3(2). – P. 239–248.

Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein determination with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. – 1951. – 193. – P. 265–275.

Sies H. Strategies of antioxidant defense // Eur. J. Biochem. – 1993. – 215. – P. 213–219.

##submission.downloads##

Опубліковано

2015-08-22

Номер

Розділ

ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНІ ПРАЦІ