ПІГМЕНТИ RHODOPSEUDOMONAS YAVOROVII ІМВ В-7620

О. В. Тарабас, С. O. Гнатуш, A. A. Галушка, О. M. Mороз

Анотація


Мета. Визначення спектрів пігментів фотосинтезу пурпурових несіркових бактерій R. yavorovii ІМВ В-7620. Mетоди. Бактерії вирощували у рідкому модифікованому середовищі АТСС № 1449 і на триптонсоєвому агарі за анаеробних чи аеробних умов. Розділення пігментів здійснювали з допомогою системи високоефективної рідинної хроматографії. Результати. Фотосинтезувальні пурпурові несіркові бактерії R. yavorovii ІМВ В-7620 можуть рости як за анаеробних, так і за аеробних умов культивування. В екстрактах пігментів бактерій R. yavorovii ІМВ В-7620 з використанням високоефективної рідинної хроматографії визначено три гомологічні форми бактеріохлорофілу а, які мали спектри поглинання за λ max =361, 605, 770 нм. У процесі розділення каротиноїдів ідентифікували лікопін (за λ max =446, 473, 504 нм) та ангідрородовібрин (за λ max=459, 485, 519 нм). Висновки. У процесі одностадійного розділення пігментних сумішей з використанням високоефективної рідинної хроматографії показано, що клітини пурпурових несіркових бактерій R. yavorovii ІМВ В-7620 за анаеробних умов культивування містять бактеріохлорофіл а, лікопін та ангідрородовібрин.


Ключові слова


пурпурові несіркові бактерії; каротиноїди; бактеріохлорофіли

Повний текст:

PDF

Посилання


Kondratieva EN, Maksimova IV, Samuilov VD. Phototrophic microorganisms. Moscow: Moscow University Publishing House, 1989. 374 p (in Russian).

Tarabas OV, Hnatush SO, Moroz OM, Vasylechko VO, Gryshchouk GV, Zvir GI, Komplikevych SYa. The usage of sulfide and thiosulfate ions by purple non-sulfur bacteria Rhodopseudomonas yavorovii. Biosystems Diversity. 2017; 25(3):181−185 (in Ukrainian).

Tarabas O, Hnatush S, Оstash B, Мutenko G, Koshla O. Identification of purple non-sulfur bacteria Rhodopseudomonas sp. Ya-2016. Visnyk Lviv. Univ. Ser. Biol. 2017; (75):140−145 (in Ukrainian).

Bent SJ, Gucker CL, Oda Y, Forney LJ. Spatial distribution of Rhodopseudomonas palustris ecotypes on a local scale. Appl. Environ. Microbiol. 2003; (69):7−5192.

Borrego CM, Garcia-Gil LJ. Separation of bacteriochlorophyll homologues from green photosynthetic sulfur bacteria by reversed-phase HPLS. Photosynthesis Research. 1994; (41):157−163.

Caumette P, Guyoneaud R, Imhoff JF, Suling J, Gorlenko V. Thiocapsa marina sp. nov., a novel, okenone-containing purple sulfur bacterium isolated from brackish coastal and marine environments. Int. J. of Syst. and Evol. Microbiol. 2004; (54):1031−1036.

Davies BH. A novel sequence for phytoene dehydrogenation in Rhodospirillum rubrum. Biochem. J. 1970; (116):93−99.

Britton G. Structure and properties of carotenoids in relation to function. The FASEB Journ. 1995; 9(15):1551−1558.

Frigaard NU, Larsen KL, Cox RP. Spectrochromatography of photosynthetic pigments as a fingerprinting technique for microbial phototrophs. FEMS Microbiol. Ecol. 1996; (20):69−77.

Hu X, Ritz T, Damjanovic A, Autenrienth F, Schulten K. Photosynthetic apparatus of purple bacteria. Quarterly Rev. Biophys. 2002; 35(1):1−62.

Hurley JP, Watras CJ. Identification of bacteriochlorophylls in lakes via reverse-phase HPLC. Limnol. Oceanogr. 1991; 36(2):307−315.

Imhoff JF, Pfennig N. Thioflavicoccus mobilis gen. nov., sp. nov., a novel purple sulfur bacterium with bacteriochlorophyll b. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001; (51):105−110.

Nelis HJ, De-Leenheer AP. Profiling and quantitation of bacterial carotenoids by liquid chromatography and photodiode array detection. Appl. Environ. Microbiol. 1989; 55(12):3065−3071.

Rajani B, Sunil Kumar R, Uma Devi M, Nayak JB. Role of purple nonsulfur bacteria Rhodopseudomonas palustris RSOU000 and Rhodopseudomonas thermotolerance RSOU555 in waste water treatment. World J. of Pharmacy and Pharmaceutical Sci. 2016; 5(8):1379–1387.

Ramana VV, Chakravarthy SK, Raj PS, Kumar BV, Shobha E, Ramaprasad EVV, Sasikala Ch, Ramana ChV. Descriptions of Rhodopseudomonas parapalustris sp. nov., Rhodopseudomonas harwoodiae sp. nov. and Rhodopseudomonas pseudopalustris sp. nov., and emended description of Rhodopseudomonas palustris. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2012; (62):1790−1798.


Пристатейна бібліографія ГОСТ


Кондратьева Е. Н., Максимова И. В., Самуилов В. Д. Фототрофные микроорганизмы. – М.: Изд. Моск. ун-та, 1989. – 374 с.

Тарабас О. В., Гнатуш С. О., Мороз О. М., Василечко В. О., Грищук Г.В., Звір Г. І., Комплікевич С. Я. Використання сульфід- та тіосульфат-йонів пурпуровими несірковими бактеріями Rhodopseudomonas yavorovii // Biosystems Diversity. – 2017. – 25, № 3 – С. 181–185.

Тарабас О., Гнатуш С., Осташ Б., Мутенко Г., Кошла О. Ідентифікація пурпурових несіркових бактерій Rhodopseudomonas sp. Ya-2016 // Вісн. Львів. ун-ту. Сер. біол. – 2017. – 75. − С. 140−145.

Bent S. J., Gucker C. L., Oda Y., Forney L. J. Spatial distribution of Rhodopseudomonas palustris ecotypes on a local scale // Appl. Environ. Microbiol. – 2003. – 69. – P. 7–5192.

Borrego C. M., Garcia-Gil L. J. Separation of bacteriochlorophyll homologues from green photosynthetic sulfur bacteria by reversed-phase HPLS // Photosynth. Research. – 1994. – 41. – P. 157–163.

Britton G. Structure and properties of carotenoids in relation to function // The FASEB Journ. – 1995. – 9, № 15. – P. 1551–1558.

Caumette P., Guyoneaud R., Imhoff J. F., Suling J., Gorlenko V. Thiocapsa marina sp. nov., a novel, okenone-containing purple sulfur bacterium isolated from brackish coastal and marine environments // Int. J. of Syst. and Evol. Microbiol. – 2004. – 54. – P. 1031–1036.

Davies B.H. A novel sequence for phytoene dehydrogenation in Rhodospirillum rubrum // Biochem. J. – 1970. – 116. – P. 93–99.

Frigaard N.-U., Larsen K.L., Cox R.P. Spectrochromatography of photosynthetic pigments as a fingerprinting technique for microbial phototrophs // FEMS Microbiol. Ecol. – 1996. – 20. – P. 69–77.

Hu X., Ritz T., Damjanovic A., Autenrienth F., Schulten K. Photosynthetic apparatus of purple bacteria // Quarterly Rev. Biophys. – 2002. – 35, № 1. – P. 1–62.

Hurley J. P., Watras C.J. Identification of bacteriochlorophylls in lakes via reverse-phase HPLC // Limnol. Oceanogr. –1991. – 36, № 2. – P. 307–315.

Imhoff J. F., Pfennig N. Thioflavicoccus mobilis gen. nov., sp. nov., a novel purple sulfur bacterium with bacteriochlorophyll b // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2001. – 51. – P. 105–110.

Nelis H. J., De-Leenheer A.P. Profiling and quantitation of bacterial carotenoids by liquid chromatography and photodiode array detection // Appl. Environ. Microbiol. – 1989. – 55, № 12. – P. 3065–3071.

Rajani B., Sunil Kumar R., Uma Devi M., Nayak J.B. Role of purple nonsulfur bacteria Rhodopseudomonas palustris RSOU000 and Rhodopseudomonas thermotolerance RSOU555 in waste water treatment // World J. of Pharmacy and Pharmaceutical Sci. – 2016. – 5, № 8. – P. 1379–1387.

Ramana V. V., Chakravarthy S. K., Raj P. S., Kumar B. V., Shobha E., Ramaprasad E.V.V., Sasikala Ch., Ramana Ch.V. Descriptions of Rhodopseudomonas parapalustris sp. nov., Rhodopseudomonas harwoodiae sp. nov. and Rhodopseudomonas pseudopalustris sp. nov., and emended description of Rhodopseudomonas palustris // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2012. – 62. – P. 1790–1798.





DOI: https://doi.org/10.18524/2307-4663.2018.1(41).120468

Посилання

  • Поки немає зовнішніх посилань.


Creative Commons License
Ця робота ліцензована Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

ISSN 2076-0558 (Print); 2307-4663 (Online)

DOI 10.18524/2307-4663